Référence : Veterinary World 2024. — PMC11045539 · DOI 10.14202/vetworld.2024.585-592 Type : Article de recherche (étude in vitro) · Plante : Cataire · Propriété → Antimicrobien Accès : ⭐ libre → texte intégral traduit Fidélité : traduction intégrale et fidèle du texte des auteurs. Appels [n] omis ; figures/tableaux « [ ] ».
Les huiles essentielles de cataire ont des effets antimicrobiens contre les bactéries, les levures et les champignons ; cependant, les informations concernant leur activité antimicrobienne contre les agents pathogènes responsables des infections cutanées canines sont limitées. Cette étude visait à identifier les constituants phytochimiques de l’huile essentielle de cataire et à évaluer son activité antimicrobienne contre Staphylococcus pseudintermedius, Malassezia pachydermatis, Microsporum canis, Microsporum gypseum, Microsporum gallinae et Trichophyton mentagrophytes.
L’huile essentielle de cataire a été extraite par hydrodistillation, et ses constituants chimiques ont été analysés par chromatographie en phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse (GC–MS). L’activité antimicrobienne in vitro a été étudiée à l’aide de tests de microdilution en bouillon et de tests de cinétique de destruction (time-kill). Pour évaluer l’effet de l’huile essentielle de cataire sur la morphologie microbienne et l’intégrité de la membrane cellulaire, une microscopie électronique à balayage (SEM) et des études de fuite ont été menées.
L’analyse GC–MS a révélé que les principaux composants de l’huile essentielle de cataire étaient les cis- et trans-népétalactone (57,09 % de l’aire des pics), les trans-, cis-népétalactone (39,69 % de l’aire des pics), le trans-caryophyllène (1,88 % de l’aire des pics) et l’oxyde de caryophyllène (1,34 % de l’aire des pics). Les valeurs de concentration minimale inhibitrice, de concentration minimale bactéricide et de concentration minimale fongicide déterminées par microdilution en bouillon variaient de 0,0625 mg/mL à 4,0 mg/mL. Le test de cinétique de destruction a montré que les effets germicides de l’huile essentielle de cataire dépendaient respectivement du temps et de la concentration. La SEM environnementale et l’analyse de fuite cellulaire ont indiqué que l’huile essentielle de cataire perturbait l’intégrité des membranes cellulaires des micro-organismes testés.
L’huile essentielle de cataire présente un potentiel en tant qu’antimicrobien alternatif contre un large éventail d’agents pathogènes des infections cutanées canines, notamment S. pseudintermedius, M. pachydermatis, Mi. canis, Mi. gypseum, Mi. gallinae et T. mentagrophytes.
Mots-clés : activité antimicrobienne, dermatite canine, cataire, Nepeta cataria.
La dermatite infectieuse chez les animaux de compagnie est une maladie courante causée par plusieurs bactéries, levures et champignons filamenteux. L’agent pathogène principal de la pyodermite canine est Staphylococcus pseudintermedius, qui peut infecter la peau, le conduit auditif et les voies urinaires des chiens, ainsi que leurs systèmes respiratoire et reproducteur. Des souches de S. pseudintermedius résistantes à la méticilline ont été signalées chez de nombreux animaux, dont les chiens, les chats, les chevaux et les ânes. Malassezia pachydermatis est un commensal cutané et un agent pathogène opportuniste qui provoque principalement la dermatite à Malassezia et l’otite externe chez les animaux immunodéprimés. Les moisissures dermatophytes sont également une cause majeure de dermatite infectieuse. Le dermatophyte associé au sol Microsporum gypseum est un champignon infectieux opportuniste qui peut être transmis de l’environnement à un animal, entraînant une dermatophytose. De nombreuses espèces de dermatophytes zoophiles, telles que Microsporum canis, Microsporum gallinae et Trichophyton mentagrophytes, peuvent également être transmises à l’homme. La prise en charge de ces infections peut être difficile en raison de l’augmentation des taux de résistance aux antifongiques parmi les isolats cliniques, en particulier à la terbinafine et aux azolés.
La cataire (Nepeta cataria L.), un membre de la famille de la menthe, contient des attractifs félins qui ont un effet apaisant sur les chats et autres félidés. De plus, les extraits de cataire ont des propriétés antioxydantes, analgésiques et anti-inflammatoires présentant un potentiel à des fins thérapeutiques et médicinales. L’huile essentielle de cataire contient des népétalactones terpénoïdes, responsables de ses effets apaisants et répulsifs pour les insectes. Il a été rapporté que les huiles essentielles et les extraits de cataire ont des activités antibactériennes et antifongiques. Cependant, l’huile essentielle de cataire a une activité antimicrobienne limitée contre les agents pathogènes animaux qui causent la dermatite.
Cette étude visait à identifier les constituants phytochimiques de l’huile essentielle de cataire et à évaluer son activité antimicrobienne contre S. pseudintermedius, M. pachydermatis, Mi. canis, Mi. gypseum, Mi. gallinae et T. mentagrophytes.
Cette étude a utilisé des expériences in vitro ; par conséquent, aucune approbation éthique n’était nécessaire pour cette étude.
Cette étude a été menée de janvier à septembre 2023 à la Faculté de médecine vétérinaire de l’Université Khon Kaen, en Thaïlande.
Des parties aériennes de cataire âgées de trois mois ont été récoltées dans des parcelles agricoles locales de la province de Khon Kaen, en Thaïlande. L’identification botanique a été confirmée, et des spécimens végétaux ont été conservés dans l’herbier de l’Université Khon Kaen (numéro de voucher d’herbier : J. Aiemsaard et al. 03). Les feuilles fraîches ont été lavées à l’eau distillée, séchées à 37 °C et broyées en poudre. Un appareil de Clevenger a été utilisé dans le processus d’hydrodistillation. Le processus a été réalisé à 90–95 °C pendant 24 h, et le produit obtenu a été mélangé à du sulfate de sodium (Sigma-Aldrich, Allemagne) et du n-hexane (Brightchem Sdn Bhd, Malaisie). Nous avons collecté la phase huileuse à l’aide d’une ampoule à décanter et l’avons filtrée à travers du papier filtre Whatman n° 1. Le solvant a été évaporé à 55 °C à l’aide d’un évaporateur rotatif (Heidolph, Allemagne).
Un aliquote de 50 μL d’huile essentielle de cataire a été dilué avec 950 μL de méthyl tert-butyl éther. L’analyse GC–MS a été réalisée à l’aide d’un chromatographe en phase gazeuse Agilent 6890N et d’un détecteur sélectif de masse 5973 (Agilent Technologies, Inc., États-Unis) équipé d’une colonne capillaire en silice fondue DB-5MS, 5 % phényl 95 % diméthyl-polysiloxane (30 m × 0,25 mm, épaisseur de film 0,25 μm). L’hélium a été utilisé comme gaz vecteur à un débit constant de 1 mL/min ; le volume d’injection (mode split) était de 2 μL. La température a été programmée pour commencer à 70 °C, puis augmentée à un rythme de 2 °C/min jusqu’à une température maximale de 220 °C pendant 10 min. Les températures de l’injecteur et de la source d’ions étaient respectivement de 230 °C et 280 °C. Nous avons comparé les spectres de masse des constituants chimiques de l’huile essentielle de cataire avec des bibliothèques de spectres de masse (Wiley 7n.1, New Jersey, États-Unis).
Staphylococcus pseudintermedius American Type Culture Collection (ATCC) 49051, M. pachydermatis ATCC 14522 et Mi. gallinae ATCC 90749 ont été achetés auprès de l’ATCC (Corporate Office, University Boulevard Manassas, Virginie, États-Unis). Mi. canis Department of Medical Sciences Thailand (DMST) 29297, Mi. gypseum DMST 21146 et T. mentagrophytes DMST 19735 ont été obtenus auprès du DMST, Nonthaburi, Thaïlande. Les bactéries et la levure ont été cultivées dans du bouillon Mueller–Hinton (MHB) et du bouillon dextrose de Sabouraud (SDB ; Becton Dickinson, France) à 37 °C pendant 24 h. Tous les dermatophytes ont été cultivés sur gélose dextrose de Sabouraud (SDA ; Becton Dickinson) à 37 °C pendant 7 jours. Une solution saline tamponnée au phosphate (PBS ; pH 7,2) a ensuite été ajoutée aux plaques et les hyphes fongiques ont été collectés à l’aide d’un râteau en verre triangulaire. Des comptages de plaques aérobies ont été utilisés pour vérifier les concentrations des suspensions microbiennes utilisées dans les tests de sensibilité.
Le test a été réalisé selon les directives du Clinical and Laboratory Standard Institute avec quelques modifications. Brièvement, l’huile essentielle de cataire a été dissoute dans du diméthylsulfoxyde (DMSO ; Sigma-Aldrich) et diluée en série au demi avec du MHB (bactéries) ou du SDB (champignons) dans des plaques de microtitration à fond rond à 96 puits (Corning Incorporated, États-Unis). Des inocula de S. pseudintermedius (1 × 10⁶ unités formant colonie [CFU]/mL) ou fongiques (2 × 10³ CFU/mL) ont été ajoutés séparément dans les puits. Les plaques de microtitration bactériennes et de levure ont été incubées à 37 °C pendant 24 h et les plaques de microtitration de moisissures ont été incubées à 30 °C pendant 72 h. Des bouillons de culture avec et sans suspensions microbiennes ont été utilisés comme puits de contrôle de croissance. La concentration minimale inhibitrice (CMI) était la concentration la plus faible d’huile essentielle qui inhibait la croissance visible après la période d’incubation. La concentration minimale bactéricide (CMB) et la concentration minimale fongicide (CMF) étaient les concentrations les plus faibles d’huile essentielle qui inhibaient la croissance ultérieure des bactéries sur gélose Mueller–Hinton (MHA ; Becton Dickinson) et des champignons sur SDA. Les témoins antimicrobiens standard étaient respectivement la céphalexine et le kétoconazole (Sigma-Aldrich).
Le test de cinétique de destruction a été réalisé selon la méthode précédemment décrite par Punareewattana et al. avec quelques modifications. Brièvement, 100 μL d’inocula contenant 1 × 10⁷ CFU/mL de S. pseudintermedius et de M. pachydermatis et 1 × 10³–1 × 10⁴ CFU/mL de champignons filamenteux ont été mélangés à 900 μL d’huile essentielle de cataire diluée (dans du PBS) pour obtenir les concentrations finales voulues ; après incubation à 30 °C pendant 1, 2, 4, 6 et 8 h, les cultures ont été diluées au dixième avec du PBS, et 100 μL des dilutions 10⁻¹–10⁻³ ont été étalés sur des plaques MHA ou SDA et incubés à 37 °C pendant 24 h (pour les bactéries et la levure) ou à 30 °C pendant 72 h (pour les champignons filamenteux). Le nombre de colonies récupérées est exprimé en réduction log₁₀ du nombre de cellules viables (CFU/mL). Les puits de contrôle de croissance négatif et de contrôle de diluant contenaient respectivement du PBS et du DMSO (62,5 µL/mL).
La SEM environnementale (E-SEM, Thermo Scientific™ Quattro-S E-SEM, Thermo Fisher Scientific Inc., États-Unis) a été utilisée pour examiner l’effet de l’huile essentielle de cataire sur la morphologie microbienne. Dans le test de cinétique de destruction, les cellules microbiennes ont été traitées pendant 10 min avec la concentration minimale d’huile essentielle de cataire produisant une réduction de 5 log₁₀ pour la bactérie et la levure ou une réduction de 3 log₁₀ pour les moisissures en 1 h. Les cellules ont ensuite été lavées 3 fois avec de l’eau distillée stérile et centrifugées à 3000× g pendant 5 min. Les culots obtenus ont été transférés sur des pastilles conductrices de carbone et laissés sécher à l’air avant d’être observés sous E-SEM à un grossissement de 2 500× (pour les champignons) et 50 000× (pour les bactéries) dans un environnement à vide poussé à 5–10 kV.
Les suspensions microbiennes ont été centrifugées à 3500× g pendant 10 min. Les culots obtenus ont été lavés 3 fois avec de l’eau distillée stérile et remis en suspension dans l’huile essentielle de cataire à la même concentration que celle utilisée dans l’étude E-SEM. Les culots remis en suspension dans du DMSO à 5 % ont servi de contrôle de fuite. Après 1, 2, 3, 4, 5 et 6 h, les échantillons ont été centrifugés à 3500× g pendant 10 min. L’intégrité de la membrane a été déterminée à l’aide d’un spectrophotomètre à microplaques (Epoch™ 2, BioTek Instruments, Inc., États-Unis) en mesurant l’absorbance ultraviolette du surnageant à 260 nm. L’huile essentielle sans micro-organismes a été utilisée comme blanc.
Le rendement en huile essentielle de cataire obtenu par hydrodistillation était de 0,41 % du poids sec de la plante. L’analyse GC–MS [ ] a révélé que deux isomères de népétalactone étaient les constituants majoritaires de l’huile extraite (totalisant 96,78 % de l’aire des pics), ainsi que le trans-caryophyllène et l’oxyde de caryophyllène (respectivement 1,88 % et 1,34 % de l’aire des pics) comme constituants minoritaires [ ]. À un temps de rétention de 20,19 min (39,69 % de l’aire des pics), les isomères de népétalactone de l’huile essentielle de cataire étaient la trans-, cis-népétalactone (E, Z-népétalactone) et la cis-, trans-népétalactone (Z, E-népétalactone) à un temps de rétention de 21,93 min (57,09 % de l’aire des pics).
[ ] Tableau 1 — Constituants chimiques de l’huile essentielle de cataire par analyse GC–MS
Le Tableau 2 présente les résultats du test de microdilution en bouillon de l’huile essentielle de cataire. La valeur CMI/CMB de la céphalexine contre S. pseudintermedius était de 0,125 µg/mL, indiquant qu’elle était sensible à la céphalexine selon les seuils du Clinical and Laboratory Standard Institute. Le kétoconazole antifongique de contrôle était plus efficace contre M. pachydermatis (CMI/CMF 0,0078 µg/mL) que contre les champignons filamenteux (CMI 0,50–8,00 μg/mL et CMF 0,50–16,00 μg/mL). Les valeurs de CMI, CMB et CMF de l’huile essentielle de cataire variaient de 0,0625 à 4,0 mg/mL. M. pachydermatis (CMI 0,0625 mg/mL), suivi de Mi. gypseum (CMI 0,25 mg/mL) et de T. mentagrophytes (CMI 0,25 mg/mL), était le plus sensible à l’huile essentielle de cataire. S. pseudintermedius, Mi. canis et Mi. gallinae avaient la CMI la plus élevée (1 mg/mL). Les valeurs de CMB et CMF étaient identiques ou supérieures à leurs CMI respectives. Pour M. pachydermatis et T. mentagrophytes, les valeurs de CMF étaient identiques à leurs CMI respectives ; cependant, pour Mi. gallinae, la valeur de CMF était deux fois plus élevée que leur CMI respective ; pour S. pseudintermedius et Mi. canis, les valeurs de CMB/CMF étaient quatre fois plus élevées que leurs CMI respectives ; et pour Mi. gypseum, la concentration fongicide était huit fois plus élevée que leur CMI respective. Trois champignons filamenteux (Mi. canis, Mi. gypseum et T. mentagrophytes) ont montré des valeurs de CMI et de CMF pour l’huile essentielle de cataire nettement inférieures à celles pour le kétoconazole.
[ ] Tableau 2 — Activité antimicrobienne de l’huile essentielle de cataire et des médicaments antimicrobiens contre les micro-organismes causant la dermatite chez les animaux (CMI, CMB/CMF ; NA = non applicable ; valeurs issues d’expériences en triplicat)
La Figure 2 [ ] illustre les résultats du test de cinétique de destruction de l’huile essentielle de cataire. Dans l’ensemble, l’huile essentielle de cataire a produit des effets bactéricides et fongicides dépendants de la dose et du temps contre toutes les cellules microbiennes examinées, les concentrations plus élevées et les durées de contact plus longues aux concentrations plus faibles montrant des effets antimicrobiens croissants. L’huile essentielle de cataire a réduit le nombre de S. pseudintermedius viables de 1,7 log₁₀ après 8 h à 1 CMI (1 mg/mL). Elle a éradiqué la bactérie (réduction de 7 log₁₀) après 6 h à 4 × CMI et après 1 h à 16 × CMI [ ]. Les effets sur M. pachydermatis étaient très similaires à ceux sur S. pseudintermedius. L’huile essentielle de cataire a diminué le nombre de M. pachydermatis viables de 1,7 log₁₀ après 8 h à 1 × CMI (0,0625 mg/mL) et a éradiqué la levure après 6 h à 4 × CMI et après 1 h à 16 × CMI [ ].
Les effets antifongiques contre chaque espèce de dermatophyte étaient légèrement différents. Contre Mi. canis, l’huile essentielle de cataire a réduit le nombre de cellules viables d’environ 1 log₁₀ après 8 h à 1 × CMI (1 mg/mL) et à 4 × CMI et l’a éradiqué (réduction de 3,5 log₁₀) après 1 h à 16 × CMI. Mi. gypseum a été relativement peu affecté par l’huile essentielle de cataire à 1 × CMI (0,25 mg/mL) avec une réduction de 0,3 log₁₀ du nombre de cellules viables après 8 h. L’augmentation de la concentration à 4 CMI a entraîné une réduction de 1,3 log₁₀ à 8 h, mais le champignon filamenteux n’a été éradiqué qu’après 2 h à 16 × CMI (réduction de 4,5 log₁₀). L’huile essentielle de cataire a pu réduire le nombre de Mi. gallinae viables de 1,3 log₁₀ après 8 h à 1 × CMI (1 mg/mL) et a éliminé le champignon (réduction de 4 log₁₀) après 6 h à 4 × CMI et 2 h à 16 × CMI. Enfin, l’huile essentielle de cataire a été relativement inefficace contre T. mentagrophytes à 1 × CMI (0,25 mg/mL), réduisant le nombre de cellules viables de 0,4 log₁₀ après 8 h, mais elle a éliminé le champignon (réduction de 2,85 log₁₀) après 1 h à la fois à 4 et 16 × CMI.
L’huile essentielle de cataire a provoqué des changements évidents dans la morphologie cellulaire de toutes les espèces testées, tels que détectés par E-SEM [ ]. La bactérie S. pseudintermedius était particulièrement sensible. Après traitement avec l’huile essentielle de cataire, seuls des fragments de forme irrégulière (diamètre, 0,2 μm) subsistaient [ ], par rapport aux petits amas caractéristiques de cellules sphéroïdes (diamètre, 0,5–1 μm) observés dans le groupe témoin bactérien [ ]. Les cellules témoins non traitées de M. pachydermatis apparaissaient lisses et de forme ovale uniforme [ ]. L’huile essentielle de cataire provoque le rétrécissement des cellules et rend les bords cellulaires ridés et rugueux, les rendant ratatinés [ ]. Tous les dermatophytes non traités présentaient une apparence filamenteuse caractéristique sous E-SEM avec des cellules rectangulaires bien définies au sein de filaments lisses [ ]. Le traitement avec l’huile essentielle de cataire a produit des filaments à l’apparence rugueuse, avec des rides marquées et une disruption des limites entre les cellules individuelles au sein des filaments [ ].
L’intégrité de la membrane cellulaire a été évaluée en mesurant l’absorbance des composants d’acide nucléique intracellulaires dans les surnageants extracellulaires à 260 nm (Abs₂₆₀). Les valeurs d’Abs₂₆₀ étaient plus faibles pour S. pseudintermedius (intervalle 0,02–0,04 et 0,05–0,08, respectivement) et M. pachydermatis (intervalle 0,02–0,04 et 0,03–0,08, respectivement) que pour les dermatophytes Mi. canis (0,13 et 0,22–0,27), Mi. gypseum (0,16 et 0,14–0,19), T. mentagrophytes (0,09 et 0,13–0,14) et Mi. gallinae (0,03 et 0,03–0,18). En général, les cellules traitées avec l’huile essentielle de cataire présentaient des valeurs d’Abs₂₆₀ accrues par rapport aux cellules témoins, indiquant une fuite d’acide nucléique hors des cellules. Les augmentations des valeurs d’Abs₂₆₀ induites par l’huile essentielle de cataire étaient dépendantes du temps pour S. pseudintermedius [ ], M. pachydermatis [ ], Mi. canis [ ] et Mi. gallinae [ ]. En revanche, la valeur maximale d’Abs₂₆₀ pour T. mentagrophytes [ ] a été atteinte à 1 h. À l’inverse, les cellules de Mi. gypseum traitées avec l’huile essentielle de cataire n’ont montré aucune différence de valeurs d’Abs₂₆₀ au fil du temps par rapport aux cellules témoins [ ]. Ainsi, les résultats de l’étude de fuite ont indiqué que l’huile essentielle de cataire compromettait l’intégrité des membranes cellulaires de tous les micro-organismes testés à l’exception de Mi. gypseum.
L’analyse GC–MS a confirmé que notre huile essentielle de cataire contenait la Z, E- et la E, Z-népétalactone comme constituants chimiques principaux (totalisant 96,78 % de l’aire des pics), ainsi que le trans-caryophyllène et l’oxyde de caryophyllène. Précédemment, Zomorodian et al. ont montré que la E, Z-népétalactone représentait 55 %–58 % de l’aire des pics GC–MS dans leur huile essentielle de cataire préparée par hydrodistillation, suivie de la Z, E-népétalactone (30,06 %–31,2 %), du trans-caryophyllène (1,1 %–2,7 %), du β-pinène (0,8 %–1,64 %), de l’α-humulène (0,82 %–0,92 %) et d’autres composés. Une étude récente de Reichert et al. a rapporté des profils chimiques légèrement différents d’huiles essentielles de cataire hydrodistillées préparées à partir de deux cultivars distincts. Selon l’aire des pics GC–MS, le cultivar CR3 contenait 69,37 % de E, Z-népétalactone, 27,45 % de Z, E-népétalactone, 1,57 % de trans-caryophyllène et 1,27 % d’oxyde de caryophyllène. En revanche, le cultivar CR9 contenait la Z, E-népétalactone comme constituant le plus élevé de l’huile (83,55 % de l’aire des pics), suivie de l’oxyde de caryophyllène (5,79 %), du trans-caryophyllène (4,72 %), de la E, Z-népétalactone (1,68 %), du β-pinène (0,58 %) et de l’humulène (0,51 %).
La CMI la plus élevée dans le test antimicrobien in vitro était de 1 mg/mL, indiquant que l’huile essentielle de cataire a une activité antimicrobienne à large spectre contre les bactéries, les levures et les champignons filamenteux qui causent la dermatite dans les modèles animaux. Les tests de cinétique de destruction ont montré que l’huile essentielle de cataire avait une activité germicide dépendante du temps et de la concentration et que des concentrations supérieures à 4 CMI pouvaient éradiquer les micro-organismes testés en 1 ou 2 h. Des études antérieures ont montré que la cataire avait une certaine activité contre les bactéries pathogènes. Paşca et al. ont trouvé des valeurs de CMI dans l’intervalle de 0,78–12,5 mg/mL et des zones d’inhibition par diffusion en gélose de 8–11 mm pour un extrait éthanolique de cataire contre les bactéries qui causent la mammite bovine, notamment Staphylococcus aureus, Staphylococcus hyicus, Staphylococcus intermedius, Escherichia coli et Bacillus subtilis. Kim et al. ont constaté que l’huile essentielle de cataire (100 μL/disque) générait une zone d’inhibition de 10 mm contre E. coli dans un test de diffusion sur disque. Il a également été démontré que l’huile essentielle de cataire a une forte activité antifongique contre les agents pathogènes fongiques des aliments et des cultures. À des concentrations supérieures à 200 ppm, l’huile essentielle de cataire a empêché la croissance de plusieurs genres d’agents pathogènes fongiques des cultures. Elle a généré des valeurs de CMI dans l’intervalle de 0,25–1,0 mg/mL contre plusieurs agents pathogènes alimentaires Aspergillus spp. Dans la présente étude, les valeurs de CMI et de CMF de l’huile essentielle de cataire contre Mi. canis, Mi. gypseum et T. mentagrophytes étaient 4 à 32 fois plus faibles que les valeurs respectives pour l’agent antifongique kétoconazole, indiquant que l’huile essentielle de cataire a un potentiel d’utilisation comme traitement alternatif contre les dermatophytes qui causent les infections cutanées canines.
L’analyse E-SEM et de fuite réalisée dans la présente étude a identifié l’altération des structures cellulaires, en particulier des membranes cellulaires, comme un mécanisme potentiel de l’activité antibactérienne et antifongique de l’huile essentielle de cataire. Cette activité est probablement due au composant népétalactone de l’huile essentielle de cataire. Les népétalactones sont des monoterpénoïdes iridoïdes produits par les espèces de Nepeta qui peuvent perturber les structures membranaires grâce à leurs propriétés lipophiles, entraînant une expansion de la membrane et une perméabilité accrue, une interférence avec les protéines membranaires et des altérations des mécanismes de transport ionique.
L’huile essentielle de cataire présente un potentiel en tant qu’antimicrobien alternatif contre un large éventail d’agents pathogènes des infections cutanées canines, notamment S. pseudintermedius, M. pachydermatis, Mi. canis, Mi. gypseum, Mi. gallinae et T. mentagrophytes. Cependant, cette étude comporte des limites, car les tests d’activité antimicrobienne n’englobent pas les souches microbiennes isolées de lésions animales et n’ont pas été étudiés chez des animaux de laboratoire. Des études supplémentaires sont nécessaires pour identifier les formulations, les dosages et l’efficacité clinique appropriés.
GNB : a préparé les échantillons bactériens et fongiques et a contribué à l’extraction de l’huile essentielle de cataire. RS et SS : ont réalisé l’extraction de l’huile essentielle de cataire et l’analyse GC–MS. PC : a préparé les échantillons végétaux et réalisé l’identification botanique. ET et JA : ont réalisé les tests antimicrobiens, la SEM et l’étude de fuite et rédigé le manuscrit. Tous les auteurs ont lu, examiné et approuvé le manuscrit final.
Cette étude a été soutenue par le Fundamental Fund de l’Université Khon Kaen (KKU), le National Science, Research and Innovation Fund (NSRF) et Thailand Science Research and Innovation (TSRI), projet ID 179481.
Les auteurs déclarent n’avoir aucun conflit d’intérêts.
Synthèse — Micro-organismes ciblés : S. pseudintermedius (bactérie, pyodermite canine), M. pachydermatis (levure), et 4 dermatophytes (Mi. canis, Mi. gypseum, Mi. gallinae, T. mentagrophytes). Efficacité de l’HE : activité à large spectre, CMI 0,0625–1 mg/mL ; la plus sensible = M. pachydermatis (CMI 0,0625 mg/mL) ; effet germicide dépendant du temps et de la concentration (éradication en 1–2 h à ≥ 4 × CMI) ; contre 3 dermatophytes, CMI/CMF 4–32 fois plus basses que le kétoconazole. Composés actifs : deux isomères de népétalactone (96,78 % de l’aire des pics) + trans-caryophyllène (1,88 %) et oxyde de caryophyllène (1,34 %) ; mécanisme = disruption de la membrane cellulaire (confirmée par E-SEM et fuite d’acides nucléiques, sauf Mi. gypseum). Niveau de preuve : étude expérimentale in vitro (souches de référence ATCC/DMST), en triplicat ; limites reconnues : pas de souches issues de lésions animales, pas d’essai in vivo, formulation/dosage clinique à définir.
↩ Retour : Cataire · Antimicrobien · Index : _INDEX études cataire (accès libre)