Référence : Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine 2023. — PMC10121355 · DOI 10.1155/2023/6934398 Type : Article de recherche original (étude expérimentale in vitro) · Plante : Millepertuis perforé · Propriété → Antimicrobien Accès : ⭐ libre (open access, CC-BY 4.0) → texte intégral traduit Fidélité : traduction intégrale et fidèle du texte des auteurs. Appels [n] omis ; figures/tableaux « [ ] ».
Contexte. La plante vivace Hypericum perforatum est largement répandue dans le monde. Elle est utilisée depuis de nombreuses années en médecine conventionnelle pour traiter diverses affections, notamment le stress, la dépression légère à modérée et les blessures mineures. Cette étude a examiné l’activité antimicrobienne de l’extrait total d’H. perforatum et de ses fractions (n-hexane, acétate d’éthyle, chloroforme et aqueuse) contre des isolats multirésistants (MDR) recueillis à partir d’échantillons cliniques, incluant Staphylococcus aureus résistant à la méticilline (SARM), Enterococcus faecalis, Escherichia coli et Klebsiella pneumonia.
Matériels et méthodes. Les parties aériennes d’H. perforatum ont été récoltées et extraites à l’aide de divers solvants, puis testées contre différentes espèces bactériennes isolées. La zone d’inhibition des extraits testés a été mesurée par un test de diffusion sur gélose, et les CMI ont été déterminées. L’analyse phytochimique de l’extrait prometteur d’H. perforatum a été réalisée par LC-ESI-MS/MS. L’examen de l’ultrastructure des bactéries les plus altérées a été effectué par microscopie électronique à transmission. Les tests antioxydants ont été réalisés par les méthodes de capacité de piégeage des radicaux DPPH et ABTS. La cytotoxicité a été rapportée vis-à-vis des cellules Vero.
Résultats. Les différents extraits d’H. perforatum ont montré une activité antibactérienne prometteuse contre les pathogènes. Alors que les sous-fractions de l’extrait total ont présenté des zones d’inhibition plus faibles et des valeurs de CMI plus élevées que l’extrait total d’H. perforatum contre les souches MDR, l’extrait total d’H. perforatum a démontré l’action antimicrobienne la plus puissante, avec une zone d’inhibition allant de 17,9 à 27,9 mm. K. pneumoniae MDR s’est révélé être la souche la plus sensible, ce qui est cohérent avec l’action inhibitrice antibactérienne de l’extrait entier d’H. perforatum. De plus, après traitement à la concentration minimale inhibitrice (CMI 3,9 μg/ml), le microscope électronique à transmission a montré des altérations de l’ultrastructure des cellules de K. pneumoniae. L’extrait méthanolique d’H. perforatum présente une valeur CC50 de 976,75 μg/ml.
Conclusion. De futurs inhibiteurs ciblant les souches MDR pourraient être révélés par ces résultats. En outre, les extraits testés ont démontré de puissants effets antioxydants, mis en évidence par les tests de piégeage des radicaux DPPH ou ABTS.
La résistance aux antibiotiques chez les bactéries pathogènes est un problème qui affecte le monde entier et qui est associé à des taux élevés de morbidité et de mortalité. Les bactéries à Gram positif et à Gram négatif ont développé des schémas de multirésistance, ce qui a conduit à des infections difficiles à traiter, voire impossibles à traiter avec les médicaments standards. Afin de remplacer les composés antimicrobiens existants, il est impératif d’étudier de nouvelles molécules antimicrobiennes issues de toutes les sources ; le coût élevé de production des médicaments de synthèse et leurs effets secondaires négatifs, comparés aux agents d’origine naturelle issus des plantes, encouragent un retour à la nature. Les composés naturels d’origine végétale constituent l’un des moyens les plus efficaces pour aborder ce problème en raison de leur toxicité minimale, de leur biodégradabilité et de leur respect de l’environnement, comparés aux agents chimiques ou synthétiques dotés de propriétés antibactériennes. Les nombreuses substances biologiquement actives présentes dans les dérivés végétaux ont encouragé les chercheurs à examiner un plus large éventail d’applications médicinales potentielles pour ces substances généralement sûres. L’espèce la plus commune du genre Hypericum et membre de la famille des Hypericaceae, Hypericum perforatum, est une riche source de flavonoïdes et est largement utilisée à des fins thérapeutiques dans le monde entier. Il est possible que l’hypéricine présente dans l’extrait d’H. perforatum agisse efficacement contre les virus enveloppés. Les formulations huileuses d’Hypericum sont appliquées pour traiter les plaies mineures, les cicatrices et les irritations cutanées. Les propriétés antibactériennes et anti-inflammatoires, ainsi que le renforcement du mouvement des fibroblastes et de la formation de collagène, sont autant de facteurs expliquant comment H. perforatum traite les plaies. H. perforatum contient de nombreux composés bioactifs aux propriétés anti-inflammatoires, et plus récemment, il a été principalement utilisé pour traiter l’anxiété et la dépression en remplacement des antidépresseurs traditionnels, avec lesquels il partage l’inhibition de la recapture des neurotransmetteurs monoamines. L’hyperforine et l’hypéricine, qui sont généralement présentes dans l’extrait hydroalcoolique total d’H. perforatum à des concentrations allant respectivement de 1 à 5 % et de 0,1 à 0,3 %, sont les molécules bioactives les plus importantes et caractéristiques de cette espèce et sont responsables des propriétés pharmacologiques de cette plante. L’extrait entier d’H. perforatum contient fréquemment d’autres substances actives telles que l’hypéroside, la rutine, la quercétine et diverses catéchines, bien que leurs concentrations puissent varier considérablement selon les variations saisonnières et le lieu d’origine de la plante. Dans la présente étude, sept bactéries pathogènes MDR issues d’échantillons cliniques ont été testées à l’aide d’un test antimicrobien in vitro sur l’extrait méthanolique entier d’H. perforatum et ses fractions.
Les parties aériennes (fleur et feuille) de la plante H. perforatum ont été récoltées à Belbeis, Elsharkia, Égypte, en mars-avril 2022, et identifiées par un botaniste de la Faculté des sciences de l’Université Al-Azhar sous le numéro de spécimen de référence 946. Elle a d’abord été nettoyée à l’eau du robinet, séchée à l’extérieur, coupée en petits morceaux, puis pulvérisée mécaniquement au moyen d’un mixeur. Ensuite, elle a été mise en suspension dans du méthanol pendant sept jours pour créer l’extrait. Les extraits ont été soumis à filtration et évaporation (50 °C) avant d’être séchés dans une étuve à 60 °C. L’extrait entier (10 g de poudre sèche) a été soumis à un processus de fractionnement guidé par bioessai, qui a commencé par une solubilisation dans l’eau et a progressé via un partage successif au n-hexane, au chloroforme et à l’acétate d’éthyle. Sous pression réduite, chaque fraction recueillie a été concentrée pour produire un résidu noir. Le rendement d’extraction était de 31,25, 4,39, 5,71 et 9,83 % respectivement pour le méthanol, le n-hexane, le chloroforme et l’acétate d’éthyle.
En bref, des échantillons cliniques de patients admis à l’Al-Zahraa University Hospital et au Cairo Specialized Hospital, dans la ville du Caire, ont été utilisés pour isoler les souches bactériennes. Les échantillons ont été cultivés sur des milieux gélosés appropriés, et le VITEK 2 a été utilisé pour identifier les isolats bactériens (Biomerieux, New Delhi, Inde).
La sensibilité des isolats bactériens aux antibiotiques commerciaux a été évaluée par la méthode de diffusion sur disque. Les antibiotiques utilisés contre les bactéries à Gram positif comprenaient la céfoxitine, la benzylpénicilline, l’oxacilline, l’imipénème, la gentamicine, la ciprofloxacine, la moxifloxacine, la résistance inductible à la clindamycine, l’érythromycine, la clindamycine, la vancomycine, la tétracycline, l’acide fusidique et le triméthoprime/sulfaméthoxazole. En revanche, les antibiotiques utilisés contre les bactéries à Gram négatif comprenaient la témocilline, l’ampicilline, l’amoxicilline/acide clavulanique, la ticarcilline, la ticarcilline/acide clavulanique, la pipéracilline, la pipéracilline/tazobactam, la céfalotine, le céfuroxime, le céfotaxime, la ceftazidime, la ceftriaxone, le céfépime, l’ertapénème, l’imipénème, le méropénème, l’amikacine, la gentamicine, la tobramycine, la ciprofloxacine, la tigécycline, la fosfomycine, la nitrofurantoïne, la péfloxacine, la minocycline, la colistine et le triméthoprime/sulfaméthoxazole (Himedia Labs, Mumbai, Inde).
Pour évaluer l’efficacité antibactérienne des extraits contre les micro-organismes, un test de diffusion en puits sur gélose a été employé. La gélose nutritive a été le milieu de culture utilisé. Des puits d’un diamètre de 6 mm ont été percés dans la gélose solide. Les inocula (1,5 × 10⁸ UFC/ml) ont été distribués sur des boîtes de gélose nutritive à l’aide d’écouvillons stériles, puis 100 μl d’extraits ont été ajoutés. La concentration de chacun des extraits utilisés était de 0,01 g/ml. Les boîtes ont ensuite été incubées pendant 24 heures supplémentaires à 37 °C. Après incubation, la zone d’inhibition de croissance de chaque extrait a été mesurée. La CMI de la fraction active à l’acétate d’éthyle a été rapportée selon Khan et al. Les extraits ont été dilués en série au double. Chaque inoculum a été préparé dans le milieu approprié pour la procédure de microdilution en bouillon, sa densité a été ajustée aux standards 0,5 de McFarland (10⁸ UFC/ml), et son volume a été dilué au 1 : 100. Sur des microplaques, la CMI a été déterminée après une période d’incubation de 24 heures à 37 °C.
Une concentration de 10⁶ cellules de K. pneumoniae a été traitée avec 0,25 microgramme par millilitre d’extrait méthanolique total d’H. perforatum, comparativement aux cellules témoins, puis laissée intacte pendant 20 heures afin de déterminer ses effets sur l’ultrastructure. La suspension a été rincée deux fois avec du tampon phosphate salin après avoir été centrifugée jusqu’à l’obtention d’un culot. Les techniques standards de fixation et d’inclusion des échantillons biologiques pour la microscopie électronique à transmission (MET) ont été appliquées après ces processus, et l’instrument JEOL010 a été utilisé pour analyser les résultats.
La séparation chromatographique a été réalisée sur une colonne C18 de 5 μm (50 × 2,0 mm de diamètre intérieur ; Bohus, Suède) équipée d’un système Agilent LC-ESI-MS (Agilent Technologies, Palo Alto, CA, USA). La température de la colonne a été maintenue à 40 °C. L’ensemble de l’analyse a duré 70 minutes. La phase mobile, constituée d’acétonitrile-eau (50 : 50, v/v) contenant 0,1 % d’acide trifluoroacétique, a été administrée à un débit de 0,3 ml/min. Lorsque le spectromètre de masse était en mode d’ions positifs, ses deux quadrupôles étaient réglés à 0,7 en largeur totale à mi-hauteur (FWHM, résolution unitaire). De plus, la tension de pulvérisation était fixée à 4500 V et la température du tube à ions à 210 °C. Les gaz gaine d’azote, de balayage ionique et auxiliaire étaient réglés respectivement à 49, 2,0 et 14 unités arbitraires. Grâce à des expériences d’infusion, les paramètres ESI-MS/MS ont été modifiés pour créer les molécules les plus déprotonées et la génération la plus efficace d’ions fragments uniques pour tous les composés. Le logiciel MS-DIAL V. 3.70 a été utilisé pour identifier et calculer le pourcentage relatif des molécules.
Pour le test de piégeage du radical DPPH, des radicaux libres stables 2,2-di(4-tert-octylphényl)-1-picrylhydrazyle (DPPH) ont été ajoutés aux échantillons testés dans une plaque à 96 puits pour provoquer la réaction. La concentration de DPPH était maintenue à 300 mM. Un volume réactionnel contenant du méthanol, différents niveaux d’extrait et du DPPH a été incubé pendant 30 minutes à 37 °C. Après incubation, l’absorbance a été enregistrée à l’aide d’un lecteur de microplaques Tecan, USA. La méthode de capacité de piégeage de l’ABTS, en tant que test de décoloration, a été utilisée pour évaluer la capacité des antioxydants à réagir directement avec les radicaux ABTS, selon Ling et al.
Dans des plaques à 96 puits, les cellules Vero ont été ensemencées avec 1 × 10⁴ cellules et 100 μl de milieu de culture DMEM. Des monocouches cellulaires confluentes ont été placées dans des microplaques à fond plat à 96 puits (Falcon, Jersey, NJ, USA) à l’aide d’une pipette multicanaux après avoir été ensemencées pendant 24 heures. Un nouveau milieu DMEM contenant différentes quantités des échantillons a ensuite été ajouté, suivi de dilutions successives au double du spécimen examiné. Les microplaques ont été incubées pendant 48 heures à 37 °C dans un incubateur humide à 5 % de CO₂. Après coloration au cristal violet, l’absorbance a été déterminée à 590 nm.
Le test t a été employé par le logiciel SPSS pour les diverses analyses des essais, et tous les tests ont été menés en triple.
Des tests de sensibilité aux antibiotiques ont été réalisés pour deux isolats bactériens à Gram positif et cinq à Gram négatif. La souche de SARM était résistante à dix des dix-neuf antibiotiques utilisés, tandis que la souche d’E. faecalis était résistante à treize des vingt antibiotiques utilisés. Concernant les isolats bactériens à Gram négatif, les rapports entre le nombre d’antibiotiques résistants et le nombre total d’antibiotiques étaient les suivants : E. coli (18/23), K. pneumoniae (19/23), P. aeruginosa (16/16), A. baumannii (20/23), Proteus mirabilis (15/23) et S. maltophilia (22/23) [ ].
La fraction n-hexane n’a montré aucune activité antibactérienne contre toutes les souches testées, à l’exception de P. mirabilis, tandis que l’extrait total d’H. perforatum et les fractions à l’acétate d’éthyle, au chloroforme et aqueuse ont révélé des activités antibactériennes variables contre toutes les souches testées, à l’exception d’A. baumannii. Les activités antibactériennes de l’extrait total d’H. perforatum et de ses cinq fractions solvants étaient, par ordre décroissant : extrait total > fraction acétate d’éthyle > fraction chloroforme > fraction aqueuse > fraction n-hexane. P. mirabilis et S. maltophilia étaient les pathogènes les moins sensibles à l’extrait aqueux, avec une zone d’inhibition de 13,4 mm. L’extrait total d’H. perforatum a montré le diamètre maximal de la zone d’inhibition contre K. pneumoniae (27,9 mm), suivi d’E. faecalis (25,3 mm), du SARM (23,0 mm), de P. aeruginosa (20,4 mm), de S. maltophilia (18,3 mm) et de P. mirabilis (17,9 mm). Le n-hexane n’a montré aucune activité antibactérienne, à l’exception de Proteus mirabilis (15,3 mm). La fraction acétate d’éthyle a montré le diamètre maximal de la zone d’inhibition contre K. pneumoniae (24,4 mm), suivi du SARM (22,3 mm), d’E. faecalis (19,8 mm), de P. aeruginosa et P. mirabilis (16,3 mm), et de S. maltophilia (15,8 mm). Les fractions chloroforme d’H. perforatum ont montré un diamètre de zone d’inhibition plus important contre E. faecalis (20,9 mm), K. pneumoniae et S. maltophilia (18,6 mm), P. aeruginosa (16,35 mm) et le SARM (16,2 mm). Enfin, la fraction aqueuse a montré une zone d’inhibition contre le SARM de 19,3 mm, suivie d’E. faecalis (18,4 mm), de K. pneumoniae (14,8 mm), et de P. mirabilis et S. maltophilia (13,4 mm). Les activités antibactériennes sont consignées dans [ ]. Les valeurs de CMI de la fraction totale ont été déterminées car elles ont révélé le niveau maximal d’activité antibactérienne. Une valeur de CMI de 125 μg/ml de la fraction totale a été enregistrée contre P. mirabilis, 62,5 μg/ml était la valeur de CMI contre S. maltophilia, 31,25 μg/ml était la valeur de CMI contre P. aeruginosa, 15,63 μg/ml était la valeur de CMI contre le SARM, 3,9 μg/ml était la valeur de CMI contre à la fois E. faecalis et K. pneumoniae, et enfin, aucune valeur de CMI de la fraction totale n’a été enregistrée contre A. baumannii, comme le montre [ ].
Dans la présente étude, de nombreuses altérations ultrastructurales ont été observées dans les cellules de K. pneumoniae sous l’effet de l’extrait méthanolique total d’H. perforatum. Dans l’échantillon témoin, les micrographies MET [ ] ont révélé la forme saine, fine et typiquement ellipsoïdale de cellules individuelles de K. pneumoniae, entourées des couches interne et externe sans aucune lésion cellulaire. La membrane cellulaire des cellules de K. pneumoniae traitées par H. perforatum était détachée des cellules, avec des cellules déformées ayant perdu leur structure. Cette étude a montré pour la première fois les altérations de l’ultrastructure impliquées dans l’action anti-K. pneumoniae de l’extrait total d’H. perforatum [ ].
À l’aide des tests à l’ABTS (acide 2,2′-azino-bis(3-éthylbenzothiazoline-6-sulfonique)) et au DPPH (2,2-diphényl-1-picrylhydrazyle), l’activité antioxydante a été évaluée en tant que capacité de piégeage des radicaux libres. Elle a été largement utilisée pour mesurer les capacités de piégeage des radicaux libres des antioxydants. Le radical libre DPPH est un radical libre stable. Les résultats ont démontré que les capacités de piégeage des radicaux DPPH ou ABTS des extraits de plantes étudiés s’exerçaient de manière dose-dépendante [ ]. De plus, l’extrait méthanolique d’H. perforatum a démontré des concentrations inhibitrices semi-maximales (IC50) de 98,73 ± 3,59 et 119,86 ± 4,12 μg/ml, respectivement. L’extrait à l’acétate d’éthyle présentait un potentiel antioxydant exceptionnel, mis en évidence par les tests DPPH et ABTS, avec des valeurs d’IC50 de 467,18 et 489,32 μg/ml, respectivement.
Il a été démontré que l’extrait méthanolique d’H. perforatum a des effets cytotoxiques négligeables, même à fortes doses (500 μg/ml ou moins). Dans ces conditions de criblage, la valeur CC50 calculée était de 976,75 μg/ml, comme le montre [ ].
Les pourcentages relatifs des composés chimiques séparés ont été calculés après séparation chromatographique de l’extrait méthanolique d’H. perforatum par LC-MS [ , ]. Cela a conduit à la séparation d’ions fragments distinctifs reconnus par le logiciel du système. Selon [ ], la quercétine-3-β-D-galactopyranoside arrivait en deuxième position avec 8,45 % du contenu total du chromatogramme LC-MS, suivie de l’hypéricine, dérivé anthraquinonique, avec 10,89 %. Comme indiqué dans [ ], la classe chimique la plus prévalente dans l’extrait d’H. perforatum était celle des flavonoïdes, suivie des sucres et polyols, des acides organiques, des anthraquinones, des acides aminés, des esters, du thiophène, des acides gras et des composés phénoliques. De plus, les composés isolés ont été répartis en un total de dix-sept catégories phytochimiques. Par ailleurs, les lipides étaient représentés par les acides gras et les stérols et constituaient 3,17 % du contenu total. D’autre part, la désoxyfructosazine en tant que pyrazines (1,83 %), les alcools (1,48 %) et les xanthones (1,26 %) ; les triterpénoïdes pentacycliques (dérivés de l’olean-12-én-3-ol) (1,17 %) ; les procyanidines en tant que tanins (1,08 %) ; et la 1,3,4-trihydro-2-thioxométhyl-2h-isoquinoléine en tant que benzopyridines (0,68 %) et les hydrocarbures (0,03 %) étaient également présents en tant que contenus mineurs.
De nouveaux composés antimicrobiens devraient être développés pour combattre les micro-organismes à l’origine de diverses infections et maladies. La médecine traditionnelle emploie l’extrait d’H. perforatum comme traitement du diabète sucré, des vers intestinaux et des morsures de serpent. Cependant, on connaît encore peu de choses sur son efficacité antibactérienne, en particulier concernant les germes résistants à de nombreux médicaments. En conséquence, l’objectif de cette étude est d’évaluer l’activité antibactérienne des parties aériennes de cette plante. La méthode de diffusion en puits sur gélose a été utilisée pour étudier l’activité antibactérienne de l’extrait entier d’H. perforatum et de ses quatre fractions solvants contre sept isolats bactériens (2 bactéries à Gram positif et 5 à Gram négatif). Dans la présente étude, le traitement des bactéries par l’extrait méthanolique d’H. perforatum a révélé un rétrécissement et une distorsion cellulaires, une activité antibactérienne immédiate sur les cellules ayant été observée, ciblant les éléments de la membrane cellulaire. Parallèlement à l’effet d’épaississement, la taille des cellules avait fortement augmenté, ce qui a provoqué l’allongement des cellules. La contraction des cellules a entraîné une réduction considérable de la taille cellulaire menant à la lyse des cellules. Les altérations de l’ultrastructure ressemblent à celles observées dans des recherches antérieures utilisant l’extrait à l’hexane de Halimeda discoidea contre les cellules de K. pneumoniae. Par exemple, certaines parois cellulaires semblaient brisées et provoquaient une fuite cytoplasmique, et certaines cellules subissaient de graves dommages, étaient déformées et s’effondraient, ce qui entraînait une diminution significative de la taille de la cellule. Selon Rajeshwari et al., l’antibiotique céfotaxime pourrait avoir induit le désordre des unités peptidoglycanes à réticulation croisée de la paroi cellulaire et fragmenté la paroi cellulaire des K. pneumoniae testées en se fixant activement aux protéines de liaison à la pénicilline inactivées. De plus, d’autres groupes de recherche ont historiquement rapporté que des antibiotiques comme la pénicilline agissent en se fixant fermement aux enzymes et protéines impliquées dans l’élongation et la division des cellules à Gram négatif. Par conséquent, on a estimé que la présence de cellules allongées dans cette étude imiterait les actions de ces deux médicaments. Bien que les cellules endommagées aient été incapables de se diviser verticalement et n’aient pas réussi à former des septa, elles étaient encore capables de s’étendre latéralement.
L’extrait méthanolique d’H. perforatum a démontré une activité de piégeage des radicaux libres plus importante que les autres extraits. Ces résultats suggèrent que la plante H. perforatum pourrait être un inhibiteur des radicaux libres. La capacité de l’acide ascorbique à piéger les radicaux a été comparée à la capacité antioxydante de la plante H. perforatum pour piéger le radical cation ABTS. Comparativement, H. perforatum a affiché une activité antioxydante relativement faible. Des investigations antérieures ont montré que l’existence d’un composant fonctionnel soutenait la propriété antioxydante de la plante H. perforatum. Il a été démontré que les extraits alcooliques d’H. perforatum possèdent d’importantes propriétés antioxydantes et de piégeage des radicaux, la fraction riche en flavonoïdes étant l’un des principaux contributeurs. Benedi et al. ont étudié la suppression de la peroxydation lipidique, l’activité de piégeage du radical hydroxyle et l’interaction avec le radical libre stable 1,1-diphényl-2-picrylhydrazyle (DPPH) dans un extrait standardisé d’H. perforatum. Selon les présents résultats, les extraits d’Hypericum présentent une activité antioxydante significative, à la fois in vitro et dans un système cellulaire, en empêchant la production de radicaux libres et la peroxydation lipidique. Selon Zou et al. et de nombreuses formulations disponibles dans le commerce, la fraction flavonoïde d’H. perforatum possède des propriétés antioxydantes et de piégeage des radicaux. Les capacités antioxydantes protègent les cellules de neuroblastome humain contre l’apoptose induite. De plus, Franchi et al. ont rapporté que différents extraits d’H. perforatum ont une forte action de piégeage, avec des valeurs d’IC50 allant de 2,32 à 9,77 μg/ml, des extraits les plus polaires aux plus hydrophiles. Étonnamment, les mécanismes d’action d’H. perforatum et de l’hyperforine incluent leur capacité à réduire la production de ROS et à corriger le déséquilibre du pH dans les cellules tumorales. Les résultats de la présente étude ont montré qu’H. perforatum contenait des naphtodianthrones, notamment l’hypéricine et la pseudohypéricine, l’hyperforine, des proanthocyanines, des flavonoïdes, des biflavonoïdes, des xanthones, des phénylpropènes, des acides phénoliques et des composés volatils, en accord avec d’autres groupes de recherche. Gibbons et al. ont également testé des extraits de 34 espèces et variétés du genre Hypericum pour leur activité contre le SARM ; 33 extraits d’Hypericum ont montré une activité considérable, et cinq de ces extraits présentaient des doses minimales inhibitrices de 64 μg/ml. De plus, les systèmes d’oxydation des lipoprotéines de basse densité (LDL) utilisaient l’hypéricine, la pseudohypéricine et l’hyperforine à des niveaux aussi bas que 2,5 μmol/l, qui sont de puissants antioxydants.
Dans ce travail, les extraits bruts d’H. perforatum et ses fractions ont montré une bonne activité antibactérienne avec de faibles CMI contre des souches bactériennes résistantes aux médicaments, en particulier l’extrait méthanolique qui présentait une action anti-K. pneumonia avec une zone d’inhibition de 27,9 ± 1,3 et une valeur de CMI de 3,9 μg/ml. Ces résultats soutiennent l’utilisation de ces extraits comme remèdes à base de plantes pour la prise en charge des infections résistantes aux antibiotiques. Par conséquent, avant son utilisation en médecine, il est conseillé de mener des investigations approfondies, incluant la confirmation in vivo de l’activité antibactérienne, de la toxicité et de la pharmacocinétique. En outre, il est possible de procéder à la séparation des molécules actives, ce qui sera très bénéfique dans la conception moderne de médicaments et pourrait se concentrer sur l’identification précise de la ou des cibles cellulaires et des bases moléculaires des résultats observés dans cette étude.
Encart de synthèse
↩ Retour : Millepertuis perforé · Antimicrobien · Index : _INDEX études millepertuis (accès libre)