Référence : Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine 2023. — PMC10423090 · DOI 10.1155/2023/9957892 Type : Article de recherche (étude expérimentale in vitro) · Plante : Plantain lancéolé · Propriété → Antimicrobien Accès : ⭐ libre → texte intégral traduit Fidélité : traduction intégrale et fidèle du texte des auteurs. Appels [n] omis ; figures/tableaux « [ ] ».
Plantago lanceolata et Sida ovata sont utilisées comme plantes médicinales depuis des siècles pour soigner de nombreuses maladies. Cette étude visait à évaluer l’activité antifongique des extraits de feuilles de P. lanceolata et de S. ovata contre des champignons dermatomycosiques. Des extraits bruts ont été préparés à partir des feuilles des deux plantes en utilisant du méthanol et de l’acétate d’éthyle. Un criblage phytochimique des feuilles des deux plantes a été réalisé. L’activité antifongique des extraits bruts a été évaluée contre trois champignons dermatomycosiques (Candida albicans, Malassezia furfur et Malassezia globosa). En outre, la concentration minimale inhibitrice (CMI) des extraits a été déterminée par la méthode de microdilution en bouillon. Une zone d’inhibition maximale de 32,00 ± 11,64 mm a été obtenue lorsque l’extrait combiné à l’acétate d’éthyle des deux plantes a été appliqué contre M. globosa. Le meilleur effet de CMI a été démontré par l’extrait à l’acétate d’éthyle contre la plupart des champignons dermatomycosiques testés. La CMI moyenne des extraits à l’acétate d’éthyle et au méthanol s’est échelonnée comme suit : (0,19 ± 0,00 à 0,65 ± 0,00 mg/mL et 0,19 ± 0,00 à 0,52 ± 0,22 mg/mL) et (0,65 ± 0,22 à 1,56 ± 0,00 mg/mL et 0,19 ± 0,00 à 0,52 ± 0,00 mg/mL), respectivement. Leur effet synergique était meilleur que l’effet de l’extrait de feuille de chaque plante prise isolément. Les valeurs de concentration minimale fongicide (CMF) ont varié selon les pathogènes fongiques lorsque les extraits des deux plantes et leurs combinaisons ont été utilisés. Les résultats de la présente étude confortent l’usage traditionnel de P. lanceolata et de S. ovata contre les infections fongiques dermatomycosiques, qui pourrait potentiellement être exploité pour le traitement des infections superficielles chez l’humain.
Les plantes ont été employées comme sources de médecine en Éthiopie pendant des milliers d’années pour traiter différentes affections. Des études suggèrent qu’environ 80 % de la population éthiopienne dépend encore des herbes médicinales pour son système de soins de santé de base. Même si la médecine traditionnelle et les plantes médicinales jouent un grand rôle dans le système de soins de santé primaires en Éthiopie, le travail réalisé jusqu’à présent dans le pays pour documenter et promouvoir correctement le savoir associé à la médecine traditionnelle est maigre. C’est pourquoi la documentation et la promotion de la médecine traditionnelle et des plantes médicinales sont considérées comme nécessaires, afin que le savoir et la compréhension de l’étendue et des caractéristiques de la médecine traditionnelle puissent être préservés et utilisés de manière durable.
En raison de leur capacité à procurer de nombreux bénéfices à différents groupes socio-économiques à travers le monde, en particulier dans la lignée de la médecine et de la pharmacie modernes, les plantes médicinales ont gagné une grande attention comme jamais auparavant. Un large éventail de parties de plantes telles que les feuilles, les racines, les tiges, l’écorce, les fleurs et les graines sont utilisées à des fins thérapeutiques et servent également de précurseurs à la synthèse de divers médicaments modernes utiles, en raison de leur importance ethnomédicale dans la nature. Les potentiels médicinaux de ces plantes pourraient être attribuables aux constituants phytochimiques bioactifs qui sont responsables de l’action physiologique sur le corps humain. En raison de leur polyvalence et de leurs applications multiples, les substances dérivées des plantes ont récemment retenu l’attention. Ces substances dérivées des plantes, qui renforcent l’utilité de la plante, sont classées comme phytochimiques.
P. lanceolata a reçu beaucoup d’attention en raison de ses multiples applications thérapeutiques, telles que son emploi comme remède cicatrisant. Cette plante herbacée était traditionnellement utilisée en Afrique du Nord pour traiter les plaies, les brûlures, les abcès, les inflammations, les hémorroïdes et les fièvres. Des rapports antérieurs ont indiqué que la plante était également efficace contre la diarrhée, la dysenterie, et qu’elle possédait des propriétés antivirale, anti-inflammatoire, astringente, antihelminthique, analgésique, analeptique, antihistaminique, antirhumatismale, antitumorale, antiulcéreuse, diurétique, expectorante et hypotensive en médecine traditionnelle.
Parmi de nombreuses plantes médicinales populaires, P. lanceolata et S. ovata ont été rapportées comme guérissant de nombreuses maladies, du rhume à l’hépatite, aux maladies de la peau, aux maladies infectieuses, aux problèmes concernant les organes digestifs, les organes respiratoires, la reproduction, la circulation, et pour faire baisser la fièvre.
P. lanceolata et S. ovata ont été utilisées soit sous forme de feuilles entières ou écrasées, soit sous forme de jus des feuilles des deux plantes, pour traiter les brûlures, arrêter les saignements et traiter toutes sortes de plaies afin de favoriser le processus de cicatrisation.
Comme il existe en Éthiopie des ressources naturelles hautement inexplorées, la recherche d’agents antifongiques nouveaux, hautement efficaces, mieux actifs, non toxiques et abordables doit être une activité prioritaire. De plus, il y a une pénurie d’informations sur l’activité antidermatomycosique synergique des extraits de feuilles de P. lanceolata et de S. ovata dans quelque partie du monde que ce soit, y compris en Éthiopie. Par conséquent, la présente étude visait à évaluer l’activité antimicrobienne des extraits de feuilles de P. lanceolata et de S. ovata contre des champignons dermatomycosiques qui causent des infections superficielles chez l’humain. Les extraits par solvant des deux plantes ont été testés séparément et de manière synergique.
Les feuilles des plantes P. lanceolata et S. ovata [ ] ont été récoltées dans l’enceinte de l’Université de Gondar, dans le Nord-Ouest de l’Éthiopie. L’identification et la vérification taxonomiques ont été réalisées au département de biologie par un botaniste de l’Université de Gondar.
Les feuilles récoltées ont été lavées à plusieurs reprises et séchées à l’air libre, protégées de l’exposition directe à la lumière du soleil, jusqu’à poids constant. Les feuilles séchées à l’air ont été broyées par un moulin analytique et emballées dans des sacs plastiques.
De l’acétate d’éthyle et du méthanol ont été utilisés comme solvants pour l’extraction des feuilles de P. lanceolata et de S. ovata : 30 g de feuilles séchées et pulvérisées des deux plantes ont été extraits avec 300 mL d’acétate d’éthyle à 99 % et de méthanol à 80 % dans des flacons séparés, puis agités pendant environ 7 jours ; les extraits obtenus ont ensuite été filtrés à l’aide de papier filtre Whatman n° 1 et les solvants ont été évaporés à l’aide d’un appareil de distillation rotative. Afin d’obtenir un extrait complètement sec, les extraits résultants ont été transférés dans des plats en verre et laissés dans une étuve à 40 °C pendant 24 h. Les extraits suivants ont été obtenus : extrait méthanolique (7 g) et extrait à l’acétate d’éthyle (11 g) à partir de la feuille de P. lanceolata, ainsi qu’extrait méthanolique (8 g) et acétate d’éthyle (9 g) à partir de la feuille de S. ovata. Ils ont ensuite été conservés à 4 °C jusqu’aux évaluations de leurs activités antidermatomycosiques.
La présence de différents constituants phytochimiques dans les feuilles de P. lanceolata et de S. ovata a été détectée à l’aide de procédures standard. La présence de flavonoïdes, d’alcaloïdes, de saponines, de tanins et de glycosides cardiaques a été caractérisée selon la méthode d’Adesegun et al. Les stéroïdes et les quinones ont également été caractérisés. En outre, la présence de phénols, de terpénoïdes et de glucides a été détectée en utilisant la procédure de Martin et al.
L’effet antidermatomycosique des extraits a été évalué à l’aide de l’essai de diffusion en puits d’agar. Les champignons dermatomycosiques pathogènes testés, à savoir C. albicans, M. furfur et M. globosa, ont été obtenus auprès de l’unité de microbiologie de l’Hôpital spécialisé complet de l’Université de Gondar. Ces isolats pathogènes ont d’abord été cultivés sur bouillon dextrosé de Sabouraud, incubés pendant 48 h. Environ 20 mL de milieu SDA stérilisé (g/L : glucose 40, peptone 10 et agar 15) ont été versés dans des boîtes de Petri. Une suspension des champignons pathogènes superficiels a été réalisée dans du sérum physiologique stérile et ajustée à l’étalon 0,5 de McFarland. Un petit volume (20 µL) de suspension fongique a été ajouté à chaque plaque de SDA, puis réparti uniformément à l’aide d’un écouvillon stérile sur la surface de l’agar. Les puits d’agar ont été préparés à l’aide d’un emporte-pièce stérilisé de 6 mm de diamètre, 2 mm de profondeur, espacés d’environ 2,5 cm pour minimiser le chevauchement des zones. Le diméthylsulfoxyde (DMSO) a été utilisé comme témoin négatif, tandis que le kétoconazole (KC) a été utilisé comme témoin positif.
Environ 100 mg de poudre d’extrait de feuille séchée ont été remis en suspension dans 1 mL de DMSO à 10 %. Environ 50 µL des extraits de feuilles des deux plantes et de kétoconazole ou de DMSO ont été placés dans les puits. Les extraits bruts et l’antibiotique standard ont été laissés diffuser pendant environ 40 min avant l’incubation, puis les plaques ont été incubées en position verticale à 30 °C pendant 5 jours. Les résultats du criblage qualitatif ont été enregistrés comme le diamètre moyen de la zone d’inhibition entourant les puits contenant la solution testée. Les résultats ont été comparés au kétoconazole et au DMSO.
De plus, des mélanges d’extraits de feuilles P. lanceolata–S. ovata ont été préparés en mélangeant 25 µL d’extrait de feuille de P. lanceolata et 25 µL d’extrait de feuille de S. ovata, ce qui totalise 50 µL, et des procédures similaires ont été suivies pour les activités restantes, comme cela a été fait pour les extraits de feuilles des plantes séparées.
La CMI est la concentration la plus basse à laquelle aucune viabilité n’a été observée après 24 h sur la base de l’activité métabolique. La valeur de CMI de chaque extrait brut de plante a été estimée en utilisant la méthode de microdilution en bouillon. 100 µL de bouillon dextrosé de Sabouraud ont été ajoutés dans les puits d’une microplaque pour chaque souche fongique pathogène. 100 µL de chaque extrait brut de feuille de plante dissous (100 mg/mL) ont ensuite été ajoutés dans le premier puits et dilués en série rangée par rangée pour donner 50, 25, 12,5, 6,25, 3,125, 1,56, 0,78, 0,39 et 0,19 mg/mL, et 100 µL du mélange ont été jetés de la dernière rangée, laissant ainsi chaque puits dilué avec un volume de 100 µL, à l’exception des témoins positif et négatif. Les inocula des souches testées ont été préparés à partir de cultures fraîches de 48 h et ajustés à l’étalon de McFarland, et 50 µL ont été versés dans les puits sauf le dernier puits. Les puits contenant les suspensions fongiques et le milieu de croissance, ainsi que le DMSO, ont été utilisés comme témoin négatif, et les puits contenant les suspensions fongiques et le milieu de croissance, ainsi que le KC, ont été utilisés comme témoin positif. Les puits ont été incubés pendant 72 h à une température de 37 °C. Ensuite, 20 µL de réactif résazurine ont été ajoutés à chaque puits pour indiquer l’activité respiratoire, et un changement de couleur du bleu au rose a été déterminé après incubation pendant 72 h à une température de 37 °C.
D’autre part, la CMF a été déterminée en sélectionnant d’abord la plaque qui n’a montré aucune croissance lors de la détermination de la CMI ; une anse de chaque plaque a été repiquée sur SDA et incubée pendant 48 h supplémentaires à 37 °C. La concentration la plus basse à laquelle aucune colonie n’a été observée a été notée comme la CMF.
Les données recueillies par l’expérimentation en laboratoire ont été saisies dans Microsoft Excel 2013 et transférées vers le logiciel SPSS version 20 pour analyse. Les résultats ont été exprimés en valeur moyenne ± écart-type (SD) de trois répétitions. Le cas échéant, les données ont été soumises à une ANOVA, et les différences entre échantillons ont été déterminées par un test t bilatéral après correction d’erreur de Bonferroni de la valeur prédictive. Une valeur P ≤ 0,05 a été considérée comme statistiquement significative.
Les différents composants phytochimiques des extraits de feuilles des deux plantes ont été analysés. Tous les composants phytochimiques testés, c’est-à-dire les stéroïdes, les terpénoïdes, les phénols, les saponines, les tanins, les alcaloïdes, les flavonoïdes, les glucides, les quinones et les glycosides ont été trouvés dans l’extrait de P. lanceolata ; cependant, les stéroïdes et les tanins n’ont pas été détectés dans l’extrait de feuille de S. ovata.
Les pathogènes fongiques testés dans la présente étude étaient C. albicans, M. furfur et M. globosa. Les extraits à l’acétate d’éthyle et au méthanol de P. lanceolata ont tous deux été testés contre ces pathogènes à l’aide de l’essai de diffusion en puits d’agar. Le résultat de la présente étude a révélé que les extraits des deux plantes, à savoir P. lanceolata et S. ovata, exercent un effet inhibiteur plus fort sur C. albicans, M. furfur et M. globosa en comparaison avec le kétoconazole, lorsqu’ils sont appliqués séparément et de manière synergique. L’extrait à l’acétate d’éthyle a montré des effets plus élevés sur tous les champignons dermatomycosiques testés. Les zones d’inhibition moyennes maximale et minimale produites par l’extrait à l’acétate d’éthyle étaient de 28,67 ± 6,69 mm et 18,17 ± 0,35 mm contre M. furfur et C. albicans, respectivement [Tableau 1]. De même, les zones d’inhibition moyennes maximale et minimale produites par l’extrait au méthanol étaient de 21,33 ± 0,35 mm et 16,33 ± 1,40 mm contre M. furfur et C. albicans, respectivement [Tableau 1]. Les extraits des deux solvants ont montré des activités relativement substantielles. Le résultat de l’analyse des données a indiqué qu’il y avait une différence d’effet antifongique significative entre les extraits à l’acétate d’éthyle et au méthanol contre M. furfur et M. globosa. Leur effet était significativement différent de celui du kétoconazole (p ≤ 0,05) [Tableau 1]. Statistiquement, aucun résultat significativement différent n’a été observé avec les deux extraits contre le témoin positif C. albicans (p ≥ 0,05).
Concernant l’extrait de feuille de S. ovata, M. furfur et M. globosa ont montré une sensibilité variable aux extraits à l’acétate d’éthyle et au méthanol. Une certaine similarité de sensibilité a été observée par C. albicans à l’extrait à l’acétate d’éthyle (15,00 ± 0,58 mm) et à l’extrait au méthanol (15,00 ± 0,19 mm). Le résultat obtenu a révélé que le KC avait un meilleur effet que les deux extraits. Aucun des extraits n’a eu un meilleur effet que le KC lorsqu’il a été appliqué contre C. albicans (21,00 ± 0,00 mm) et M. furfur (19,00 ± 0,00 mm) [Tableau 2]. Statistiquement, aucune différence significative n’a été observée avec les deux extraits contre C. albicans et M. furfur. Cependant, leur effet était significativement différent contre M. globosa (p ≥ 0,05) [Tableau 2].
Comme le montre clairement le [Tableau 3], de meilleurs résultats ont été obtenus à partir de la combinaison des extraits bruts à l’acétate d’éthyle et au méthanol des feuilles des deux plantes contre les microbes testés. M. globosa était hautement sensible à l’extrait à l’acétate d’éthyle avec une zone d’inhibition moyenne de 32,00 ± 11,64 mm. Statistiquement, aucune différence significative n’a été observée avec les deux extraits contre tous les champignons pathogènes superficiels testés (p ≥ 0,05). Mais leur effet était significativement différent de celui du kétoconazole (P ≤ 0,05) [Tableau 4].
Les valeurs de CMI des extraits testés de la feuille de la plante P. lanceolata contre les champignons pathogènes testés variaient généralement d’un pathogène à l’autre [Tableau 3]. L’extrait à l’acétate d’éthyle a montré une valeur de CMI variable allant de 0,19 ± 0,00 à 0,65 ± 0,00 mg/mL. La valeur de CMI la plus basse a été observée sur C. albicans et M. furfur, et la valeur de CMI la plus élevée a été enregistrée sur M. globosa (0,65 ± 0,00 mg/mL). Concernant l’extrait au méthanol, la valeur de CMI la plus basse (0,19 ± 0,00 mg/mL) a été enregistrée sur M. furfur et M. globosa à la fois, tandis que la plus élevée (0,52 ± 0,22 mg/mL) a été observée contre C. albicans.
Les valeurs de CMI des extraits testés de la feuille de la plante S. ovata contre les microbes testés variaient généralement d’un pathogène à l’autre. De manière générale, tous les pathogènes fongiques testés ont été inhibés par la concentration la plus basse d’extrait au méthanol par rapport à l’extrait à l’acétate d’éthyle. Par conséquent, l’extrait au méthanol était un meilleur choix d’extrait pouvant exercer un effet sur les microbes testés [Tableau 3].
Concernant les effets combinés des extraits de feuilles des deux plantes, tous les pathogènes testés ont été inhibés par une concentration moindre des extraits à l’acétate d’éthyle des deux plantes, c’est-à-dire 0,19 mg/mL. Il en va de même pour l’extrait au méthanol tant pour M. furfur que pour M. globosa, à l’exception de C. albicans qui a été inhibé par 0,39 mg/mL.
D’après le résultat obtenu, les valeurs de CMF des extraits testés de la plante P. lanceolata variaient généralement dans l’intervalle de 0,19 à 3,12 mg/mL. L’acétate d’éthyle et le méthanol étaient les extraits les plus puissants avec une valeur de CMF de 0,19 mg/mL pour C. albicans et M. furfur, respectivement. Une CMF plus élevée (3,12 mg/mL) a été enregistrée contre C. albicans par l’extrait au méthanol. Les valeurs de CMF enregistrées par l’acétate d’éthyle et le méthanol étaient de 1,56 ± 0,00 et 0,39 ± 0,00 mg/mL contre M. globosa, respectivement.
Les valeurs de CMF de ces extraits provenant des feuilles de la plante S. ovata variaient selon les pathogènes fongiques. La valeur de CMF la plus basse de l’acétate d’éthyle, c’est-à-dire 3,12 ± 0,00 mg/mL, 1,56 ± 0,00 mg/mL et 1,56 ± 0,00 mg/mL, a été enregistrée contre C. albicans, M. furfur et M. globosa, respectivement, tandis que la valeur de CMF la plus basse de l’extrait au méthanol, c’est-à-dire 1,56 ± 0,00 mm, 0,19 ± 0,00 mg/mL et 0,39 ± 0,00 mg/mL, a été enregistrée contre C. albicans, M. furfur et M. globosa, respectivement [Tableau 3].
Les extraits combinés des deux plantes ont montré des effets synergiques considérables sur M. furfur. Mais le meilleur résultat a été enregistré par l’extrait à l’acétate d’éthyle à une concentration de 0,19 ± 0,00 mg/mL contre M. furfur et M. globosa. D’autre part, C. albicans, M. furfur et M. globosa pouvaient être tués par l’extrait au méthanol aux concentrations de 0,52 ± 0,00 mg/mL, 0,19 ± 0,00 mg/mL et 0,39 ± 0,00 mg/mL, respectivement [Tableau 3]. En général, des valeurs de CMI et de CMF variées ont été obtenues ; cependant, des rendements significativement meilleurs ont été obtenus lorsque les extraits combinés agissaient sur les champignons dermatomycosiques.
Dans la présente étude, une analyse phytochimique qualitative des extraits de feuilles de P. lanceolata et de S. ovata a été entreprise. L’extrait brut de feuille de P. lanceolata s’est révélé contenir des stéroïdes, des terpénoïdes, des phénols, des saponines, des tanins, des alcaloïdes, des flavonoïdes, des glucides, des quinones et des glycosides. Le résultat ci-dessus était en accord avec le travail réalisé par Fayera et al., qui ont confirmé des métabolites secondaires appartenant à différents groupes phytochimiques de cette plante, dont les saponines, les tanins, les alcaloïdes, les terpénoïdes, les flavonoïdes et les composés phénoliques. De même, les extraits bruts de feuille de S. ovata se sont révélés contenir des terpénoïdes, des phénols, des saponines, des alcaloïdes, des flavonoïdes, des glucides, des quinones et des glycosides. Le résultat ci-dessus était en accord avec le rapport de recherche d’Irobi et al. dont l’analyse de cette plante a montré la présence de glucides, d’alcaloïdes, de saponines, d’huile fixe et de phytostérols. Le résultat ci-dessus était encore concordant avec le rapport d’étude réalisé par Souza et al. dont l’analyse de Spiranthera odoratissima a montré la présence d’acides organiques, de sucres réducteurs, de flavonoïdes, de composés saponiniques, de composés coumariniques, de composés phénoliques, de tanins, de composés puriques, de catéchines, de dérivés de flavonols, de lactones sesquiterpéniques et d’anthraquinones. Cela montre que les phytochimiques des extraits de feuilles des plantes étudiées ont contribué à leur activité antimicrobienne contre les champignons dermatomycosiques cliniquement isolés testés. Des études suggèrent que les composés phénoliques perturbent les membranes cellulaires microbiennes en modifiant la perméabilité et en provoquant la fuite du contenu cellulaire, ou interfèrent avec les protéines membranaires entraînant une désorganisation structurelle. Les flavonoïdes affectent également les membranes cellulaires des micro-organismes et inhibent la synthèse des acides nucléiques (causée par l’inhibition de la topoisomérase) et le métabolisme énergétique (causé par l’inhibition de la NADH-cytochrome c réductase ou de l’ATP synthase). En outre, ce métabolite secondaire interrompt la synthèse de la paroi cellulaire et de la membrane cellulaire. D’autre part, les alcaloïdes possèdent la capacité de perturber la paroi cellulaire, d’inhiber la synthèse de l’ADN et d’interrompre l’activité des enzymes (estérase, ADN-polymérase et ARN-polymérase) ou la respiration cellulaire. Les quinones ont le potentiel de former un complexe irréversible avec les acides aminés nucléophiles des protéines. Les cibles probables dans la cellule microbienne sont les adhésines exposées en surface, les polypeptides de la paroi cellulaire et les enzymes liées à la membrane. Les tanins peuvent agir en inactivant/inhibant les adhésines microbiennes, les enzymes et les protéines de transport de l’enveloppe cellulaire. Les tanins affectent également les micro-organismes de plusieurs manières, notamment en déstabilisant leur membrane cellulaire, en perturbant leur métabolisme, ainsi qu’en les privant des substrats requis pour la croissance microbienne.
Les trois champignons dermatomycosiques pathogènes humains testés ont montré une sensibilité antimicrobienne différente aux extraits de feuilles des deux plantes. La raison possible de cette différence d’activité antifongique pourrait être le profil de sensibilité des pathogènes et les différences dans les mécanismes d’action des métabolites de chaque fraction de solvant.
Dans cette étude, tous les extraits bruts ont été appliqués contre trois champignons dermatomycosiques (superficiels). Ainsi, l’activité antifongique des extraits à l’acétate d’éthyle et au méthanol de la plante P. lanceolata a été testée contre trois pathogènes fongiques. Il a été constaté que la plante avait une activité antifongique contre ces microbes. Ce résultat était en accord avec les études menées en Éthiopie par Fayera et al.
Les études antérieures évaluant les activités antimicrobiennes des deux plantes médicinales contre les champignons dermatomycosiques sont rares ; les résultats ne peuvent être comparés à aucune autre étude. Cependant, nous avons essayé de comparer les résultats avec les travaux réalisés sur des bactéries et des champignons pathogènes.
L’activité antimicrobienne de P. lanceolata dans cette étude est concordante avec les résultats d’une étude de Eshetie et al. De même, la plante S. ovata a montré différentes activités antifongiques contre les trois champignons dermatomycosiques pathogènes testés. L’explication possible en est que les plantes sont riches en composés dotés d’activités antifongiques potentielles.
L’extrait à l’acétate d’éthyle de P. lanceolata a montré des effets plus élevés sur tous les champignons testés par rapport à l’extrait au méthanol, avec des zones d’inhibition moyennes de 28,67 ± 6,69 mm, 27,00 ± 1,00 mm et 18,17 ± 0,35 mm contre M. furfur, M. globosa et C. albicans, respectivement. Les zones d’inhibition moyennes formées par l’acétate d’éthyle étaient meilleures que celles rapportées par Eshetie et al. Cette différence pourrait être due à une différence de méthodologie, à l’âge de la plante et à la différence dans le mécanisme de défense contre les substances chimiques étrangères des espèces bactériennes et fongiques.
La présente étude a indiqué que les extraits à l’acétate d’éthyle et au méthanol de la feuille de la plante S. ovata avaient tous deux un bon effet antifongique sur C. albicans, M. furfur et M. globosa. Un meilleur résultat a été obtenu dans le rapport d’étude d’Akilandeswari et al. sur l’activité antimicrobienne des extraits de feuilles de l’espèce apparentée S. acuta Burm. D’autre part, Abdulrahman et al. ont obtenu un résultat médiocre sur l’extrait de feuille de la même plante. La variation pourrait tenir aux différences dans les modes de préparation des extraits, à la différence d’espèces de plantes, aux différentes conditions géographiques et environnementales durant la croissance de la plante, ainsi qu’à la différence d’âge des plantes.
Selon les résultats de cette étude, l’effet synergique des extraits de feuilles de P. lanceolata et de S. ovata présentait une zone d’inhibition plus large contre les champignons dermatomycosiques pathogènes testés que celle de l’extrait de feuille de chaque plante appliquée séparément. L’effet synergique peut être attribué aux possibilités que les extraits affectent les différents processus fongiques dans la cellule. Ce pourrait être la raison fondamentale pour laquelle la communauté locale utilise largement le mélange d’extraits bruts de ces plantes pour traiter différentes infections fongiques pathogènes.
La présente étude a révélé que les valeurs de CMI les plus basses observées par l’extrait à l’acétate d’éthyle de la feuille de P. lanceolata contre M. furfur et C. albicans étaient de 0,19 ± 0,00, tandis que la valeur de CMI du même extrait contre M. globosa était de 0,65 ± 0,00. La valeur de CMI enregistrée dans cette étude était bien meilleure que celle rapportée par Eshetie et al. qui ont rapporté une valeur de CMI de 12,5 mg/mL à 50 mg/mL contre différentes bactéries testées. Cette différence pourrait être due aux pathogènes expérimentaux utilisés. La plante pourrait être efficace pour les pathogènes fongiques par rapport aux pathogènes bactériens.
Concernant les extraits de feuille de S. ovata, tous les pathogènes fongiques testés ont été inhibés par la concentration la plus basse d’extrait au méthanol par rapport à l’extrait à l’acétate d’éthyle. Par conséquent, l’extrait au méthanol était un meilleur choix d’extrait pouvant exercer un effet sur les microbes testés [Tableau 3].
Concernant la valeur de CMI des effets combinés des extraits, les deux extraits se sont avérés avoir une efficacité accrue (concentration la plus basse de 0,19 mg/mL) par rapport à l’application individuelle des extraits [Tableau 3]. Il en va de même pour l’extrait au méthanol tant pour M. furfur que pour M. globosa, à l’exception de C. albicans qui a été inhibé par 0,39 mg/mL [Tableau 3].
De l’étude d’ensemble, on peut conclure que les extraits de feuilles de P. lanceolata et de S. ovata se sont révélés contenir divers métabolites secondaires phytochimiques. Les extraits des deux plantes ont montré une activité antimicrobienne lorsqu’ils ont été utilisés contre les pathogènes fongiques superficiels humains. L’effet combiné des extraits bruts des feuilles des deux plantes s’est révélé avoir une activité antifongique plus élevée que l’effet des extraits de feuille de chaque plante isolée. Les résultats de la présente étude confortent l’usage traditionnel de P. lanceolata et de S. ovata contre les infections fongiques dermatomycosiques, qui pourrait potentiellement être exploité pour le traitement des infections superficielles chez l’humain.
Les données utilisées dans cette étude sont incluses dans l’article.
Les auteurs déclarent n’avoir aucun conflit d’intérêts.
MG a réalisé les expériences dans le cadre de son travail de thèse de master. Les deux auteurs ont collecté et décrit les feuilles des deux plantes et ont conçu l’expérience. MG a mené tous les travaux de laboratoire. Ce travail a été réalisé sous la supervision de TMJ. TMJ a contribué à l’édition du manuscrit.
Champignons ciblés : trois champignons dermatomycosiques responsables d’infections superficielles cutanées — Candida albicans, Malassezia furfur et Malassezia globosa.
Efficacité du plantain lancéolé : l’extrait de feuilles de Plantago lanceolata (surtout l’extrait à l’acétate d’éthyle) a inhibé les trois champignons, avec les zones d’inhibition les plus fortes contre M. furfur (28,67 ± 6,69 mm) et M. globosa (27,00 ± 1,00 mm), et plus faible contre C. albicans (18,17 ± 0,35 mm) ; CMI aussi basses que 0,19 mg/mL contre M. furfur et C. albicans. La combinaison avec S. ovata était supérieure à chaque plante seule (effet synergique), atteignant 32,00 ± 11,64 mm contre M. globosa. Le plantain contenait la gamme phytochimique la plus complète (stéroïdes, terpénoïdes, phénols, saponines, tanins, alcaloïdes, flavonoïdes, glucides, quinones, glycosides).
Niveau de preuve : faible. Étude in vitro unique (Éthiopie, University of Gondar), sur souches cliniques isolées, avec trois répétitions ; aucune donnée clinique humaine. Les auteurs eux-mêmes soulignent l’absence d’études comparables. Résultat encourageant appuyant l’usage traditionnel, mais non transposable directement à un usage thérapeutique.
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